Etude d'article : potentiel de membrane des mitochondries - tranports membranaires |
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Ci-dessous, un extrait de l'article Podrabsky & Hand (2015) à analyser. « We measured proton leak respiration as a function of the membrane potential (ΔΨM) in mitochondria isolated from diapausing and post-diapausing embryos. Because ΔΨM is the driving force for the leak, it is essential to compare proton conductances between different states only at the same driving force. When the F1Fo-ATP synthase (complex V) is inhibited, mitochondrial respiration is then proportional to proton leak rate through the inner membrane. Accordingly, the kinetic response of the proton conductance pathway to its driving force can be measured as the relationship between respiration rate and ΔΨM when the latter is varied by titrating the electron transport system (ETS) with inhibitors. Our results indicate clearly that proton conductance, as judged by leak respiration, does not differ between mitochondria isolated from diapausing and post-diapausing embryos (Figure 8). Consequently, because proton conductance across the inner mitochondria membrane is not restricted during diapause, ΔΨM is undoubtedly compromised. » Figure 8 : Kinetic response of proton leak at 25°C (measured as respiration rate) as a function of the driving force (mitochondrial membrane potential, ΔΨM). « Mitochondria were isolated from diapausing and post-diapausing embryos of Artemia franciscana. Succinate plus rotenone was used as the substrate to support leak respiration (state 4) in the presence of oligomycin (inhibitor of the F1Fo-ATP synthase) and nigericin (K+/H+ exchanger), the latter of which served to convert the ΔpH to ΔΨM. Stepwise addition of malonate (complex II inhibitor) was employed to progressively inhibit the electron transport system and thus lower overall ΔΨM. Triphenylmethyl phosphonium (TPMP)-sensitive electrodes were used to measure the distribution of this lipophilic cation across the inner membrane, from which the ΔΨM was calculated with the Nernst equation. » Questions a. Rechercher cet article via la base de données « Pubmed ». Qu'est Pubmed ? Une version « PMC » en accès « libre » est disponible. Qu'est PMC ? |
1. PubMed est une ressource gratuite développée et maintenue par le "National Center for Biotechnology Information" (NCBI) à la "National Library of Medicine" (NLM). "PubMed comprises more than 26 million citations for biomedical literature from MEDLINE, life science journals, and online books. Citations may include links to full-text content from PubMed Central and publisher web sites." PMC ("PubMed Central") est une base de données bibliographiques (4 millions d'articles scientifiques et autres) dans le domaine de la biologie (au sens large). "PubMed Central (PMC) is a free full-text archive of biomedical and life sciences journal literature at the U.S. National Institutes of Health's National Library of Medicine (NIH/NLM)." 2. Artemia franciscana
Diapause
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3. La chaîne respiratoire
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Complexe ou protéine de la chaîne respiratoire | Entité transferée | Inhibiteurs |
NADH - coenzyme Q oxydoréductase (complexe I) | électrons et protons | roténone amytal |
succinate - coenzyme Q oxydoréductase (complexe II) | électrons | malonate |
coenzyme Q | électrons et protons | ----------- |
coenzyme Q - cytochrome c oxydoréductase (complexe III) | électrons et protons | antimycine |
cytochrome C | électron | ----------- |
cytochrome c oxydase (complexe IV) | électrons et protons | KCN / CO / NaN3 |
La nigéricine
L'oligomycine
L'ATP synthase F0F1 C'est le complexe V de la chaîne respiratoire. Il utilise le gradient de concentration de protons comme source d'énergie pour synthétiser l'ATP. Le sigle "F" désigne un facteur de couplage, selon la nomenclature des enzymes : en effet, l'ATP synthase couple la phosphorylation de l'ADP en ATP à l'oxydation de substrats dans la mitochondrie. Source : Wang & Oster (1998)
La fuite des protons ("proton leak") Il s'agit du retour des protons dans la matrice par d'autres voies que l'ATP synthase. C'est un processus "basal", non pathologique, non spécifiquement régulé et qui peut représenter jusqu'à 50% de l'activité respiratoire dans le muscle squelettique du rat. Deux types de protéines de transport sont principalement impliquées dans ce processus :
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4. Principe de la mesure du potentiel de membrane de la mitochondrie avec le TPMP+ Le caractère lipophile des cations phosphonium leur permet de traverser la membrane interne mitochondriale (sans ionophore) sous l'action du potentiel de membrane : ils s'accumulent dans la matrice mitochondriale du fait de leur charge positive. Exemples de cations lipophiles : TPP+ (cation tétraphényl phosphonium) ou TPMP+(cation triphénylmethyl phosphonium). Cette caractéristique permet de mesurer le potentiel de membrane des mitochondries isolées respirant en présence de succinate. Le TPMP+ est incubé avec des mitochondries énergisées. Le cation est alors distribué, sous l'action du potentiel de membrane, entre le milieu extérieur à la mitochondrie ([TPMP+]extracellulaire) et la matrice mitochondriale ([TPMP+]intracellulaire). On mesure :
On applique alors la relation de Nernst pour calculer le potentiel de membrane : ΔΨM = [RT / zTPMP+ . F] . ln ([TPMP+]extracellulaire / [TPMP+]intracellulaire) Le terme [2.303 R.T / z.F] vaut environ 60 mV à 37 ° C : il y a donc une accumulation du cation libre intracellulaire d'un facteur 10 pour un potentiel de membrane de - 60 mV. Le potentiel de membrane de la mitochondrie est de - 120 à - 180 mV : il y a donc une accumulation de plusieurs centaines de fois dans la matrice mitochondriale. |
5. Adsorption du TPMP et entrée dans la matrice mitochondriale Figure a (ci-dessous) : adsorption sur la bicouche phospholipidique de la membrane interne des mitochondries d'un cation triphénylphosphonium (conjugué à un groupement X). Ce mécanisme permet aux cations lipophiles d'accéder à la matrice de la mitochondrie même en absence de potentiel de membrane. En présence d'un potentiel de membrane, la distribution des cations s'équilibre conduisant à une très forte accumulation dans la matrice mitochondriale. Source : Ross et al. (2005) Figure b : profil d'énergie du déplacement d'un cation TPMP+ au travers d'une bicouche phospholipidique. On observe des puits d'énergie potentielle à proximité des groupes carbonyle des chaînes d'acides gras des phospholipides.
Figure c : isotherme de Langmuir de l'adsorption d'un cation phosphonium sur une bicouche phospholipidique. La fonction θ représente la fraction des sites de fixation sur la membrane occupés par le cation phosphonium en fonction de la concentration du cation, pour différentes valeurs de K (constante d'association du cation sur la bicouche phospholipidique). |
6a. Traduction de la partie de l'article en énoncé Nous avons mesuré la fuite des protons au cours de la respiration en fonction du potentiel de membrane (ΔΨM) dans des mitochondries isolées à partir de cellules d'embryons en diapause et en post-diapause. Pusique ΔΨM est la force motrice de la fuite, il est essentiel de comparer la conductance des protons de différents états pour une même force motrice. Lorsque l'ATP synthase F1Fo (complexe V) est inhibée, la respiration mitochondriale est alors proportionnelle au débit de fuite des protons à travers la membrane interne. En conséquence, la cinétique de la conductance des protons en réponse à cette force motrice peut être mesurée via la relation entre la vitesse de respiration et ΔΨM : on fait varier ΔΨM et on titre le système de transport d'électrons en présence d'inhibiteurs. Nos résultats indiquent clairement que la conductance des protons, mesurée par leur fuite au cours de la respiration, ne diffère pas entre les mitochondries isolées de cellules d'embryons en diapause et en post-diapause (figure 8). Par conséquent, puisque la conductance des protons à travers la membrane mitochondriale interne n'est pas limitée pas au cours de la diapause, ΔΨM est sans aucun doute perturbée / annihilé. Figure 8 : cinétique de la fuite des protons à 25°C (mesurée par la vitesse de respiration) en fonction de la force motrice (le potentiel de membrane de la mitochondrie, ΔΨM).
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6b. Signification de l'expérience représentée dans la figure 8 Lorsque l'ATP synthase est inhibée, la vitesse de respiration est proportionnelle à la vitesse de la fuite des protons au travers de la membrane interne mitochondriale. On mesure donc la vitesse de respiration quand ΔΨM varie lorsque l'on modifie la chaîne respiratoire par des inhibiteurs :
L'état 4 : lorsque le rapport [ATP] / [ADP] s'approche de l'équilibre, la force proton motrice augmente, le retour des protons via l'ATP synthase s'arrête et la respiration diminue. Pour obtenir des informations concernant la dissipation de protons, il est nécessaire d'avoir le graphique : [courant / tension] = f(conductance pour une gamme de potentiels) :
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7. Résultat La vitesse de consommation d'oxygène est représentée en fonction du potentiel de membrane mitochondrial ΔΨM, qui est la force motrice de cette fuite (figure 8, ci-dessous). Il n'y a pas de différence de conductance des protons à travers la membrane interne des mitochondries isolées de cellules d'embryons en diapause et en post-diapause : le potentiel de membrane ΔΨM est donc perturbé / annihilé. Avantage biologique à ne pas maintenir la force proton motrice : réduction considérable de la consommation d'énergie pendant la diapause. Le principal inconvénient est une probabilité accrue :
Pour survivre sans eau, les organismes dits anhydrobiotes (exemples : le ver Caenorhabditis elegans et la levure Saccharomyces cerevisiae) changent leur état métabolique. De tels organismes produisent aussi des molécules qui préservent la structure de leurs cellules. Parmi ces molécules essentielles, on peut citer le tréhalose (diholoside - 2 unités de glucose). |
Références bibliographiques |
Deutsch et al. (1979) « Cellular energy metabolism, trans-plasma and trans-mitochondrial membrane potentials, and pH gradients in mouse neuroblastoma » Proc. Natl. Acad. Sci. USA 76, 2175 - 2179 Ross et al. (2005) "Lipophilic triphenylphosphonium cations as tools in mitochondrial bioenergetics and free radical biology" Biochemistry (Mosc) 70, 222 - 230 |
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Brand & Nicholls (2011) "Assessing mitochondrial dysfunction in cells" Biochem J. 435, 297 - 312 Podrabsky & Hand (2015) « Physiological strategies during animal diapause: lessons from brine shrimp and annual killifish » J. Exp. Biol. 218, 1897 - 1906 Elkalaf et al. (2016) "Mitochondrial Probe Methyltriphenylphosphonium (TPMP) Inhibits the Krebs Cycle Enzyme 2-Oxoglutarate Dehydrogenase" PLoS One 11, e0161413 |