La β-oxydation des acides gras et la cétogénèse
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1. Présentation générale

2. Activation des acides gras

3. Entrée dans la mitochondrie : rôle de la carnitine

4. La β-oxydation

a. Les réactions d'un tour d'hélice des acides gras saturés

b. Bilan de la β-oxydation des acides gras saturés

c. La β-oxydation des acides gras à nombre impair de carbones

d. La β-oxydation des acides gras insaturés

5. La cétogénèse

6. Liens Internet et références bibliographiques

 

1. Présentation générale

L'oxydation des acides gras est la source majeure d'ATP. Certains oiseaux migrateurs parcourent 1500 km en une fois à la vitesse de 35km/h : seuls les "combustibles" lipidiques apportent une telle énergie. En comparaison, le glycogène fournit aux muscles une quantité d'ATP qu'ils consomment en 1 heure.

L'oxydation des acides gras est donc une voie métabolique capitale pour l'homéostasie énergétique de la cellule (foie, coeur, muscle squelettique), notamment en période de jeûne (le cerveau ne catabolise pas les acides gras en période de jeûne). De plus, le foie transforme, dans certaines conditions, les acides gras en corps cétoniques qui sont une source additionnelle d'énergie pour tous les tissus, y compris le cerveau.

Les acides gras sont principalement synthétisés dans le foie. Ils dérivent des triglycérides des lipoprotéines du sang ou des adipocytes (tissus adipeux). Ils sont stockées sous forme d'esters d'acides gras dans les adipocytes.

Chez les mammifères, les lipides alimentaires sont essentiellement des triacylglycérols. La digestion des lipides alimentaires commence quand ils se mélangent, dans l'intestin, aux sels biliaires (principaux sels biliaires chez l'homme : acide taurocholique, acide glycocholique - dérivés du cholestérol).

Quand le taux d'adrénaline augmente dans le sang (jeûne ou exercice), la stimulation de récepteurs β-adrénergiques à la surface des adipocytes active l'adénylate cyclase qui catalyse la formation d'AMP cyclique (AMPc). La protéine kinase dépendante de l'AMPc active une lipase par phosphorylation. Les acides gras et le glycérol sont libérés des triacylglycérols et ils traversent la membrane plasmique.

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Les triacylglycérols sont hydrolysés sur le C1 et le C3 par la lipase pancréatique, ce qui libère des acides gras, des intermédiaires (1,2-diacylglycérol et 2,3-diacylglycérol) et enfin le 2-monoacylglycérol.

triacylglycerol diacylglycerol lipase pancreatique glycerophospholipide biochimej

Les phospholipases A2 (EC 3.1.1.4) hydrolysent spécifiquement la liaison acyle sn-2 du carbone 2 du glycérol des glycérophospholipides :

beta oxydation triacylglycerol phospholipase A2 hydrolyse glycerophospholipide biochimej

Cette hydrolyse relargue l'acide arachidonique et des lysophospholipides.

Exemples d'acides gras
Carbone Doubles liaisons Position des doubles liaisons Nom commun Nom IUPAC Point de fusion
12 0 C12:0 laurate
(acide laurique)
dodécanoate
(acide dodécanoique)
43°C
14 0 C14:0 myristate tétradécanoate 52°C
16 0 C16:0 palmitate hexadécanoate 63°C
18 0 C18:0 stéarate octadécanoate 70°C
20 0 C20:0 arachidate icosanoate 75°C
22 0 C22:0 béhénate docosanoate 81°C
24 0 C24:0 lignocérate tétracosanoate 84°C
16 1 C16:1 Δ9 palmitoléate cis9-hexadécénoate - 0,5°C
18 1 (végétaux) C18:1 Δ9 (acide gras ω-9) oléate cis9-octadécénoate 13°C
18 2 (végétaux) C18:2 Δ9,12 (acide gras ω-6) linoléate cis,cis9,12-octadécadiénoate - 9°C
18 3 (végétaux) C18:3 Δ9,12,15 (acide gras ω-3) linolénate all-cis9,12,15-octadécatriénoate - 17°C
18 4 (végétaux) C18:4 Δ6,9,12,15 (acide gras ω-3) stéaridonate all-cis6,9,12,15-octadécatétraénoate ------
20 4 (animaux) C20:4 Δ5,8,11,14 (acide gras ω-6) arachidonate all-cis5,8,11,14-icosatétraénoate - 49°C
20 5 (poisson) C20:5 Δ5,8,11,14,17(acide gras ω-3) eicosapentaénoate all-cis5,8,11,14,17-eicosapentaénoate ------
22

5 (animaux)

C22:5 Δ4,7,10,13,16 (acide gras ω-6)

C22:5 Δ7,10,13,16,19 (acide gras ω-3)

acide osbond

clupanodonate

all-cis4,7,10,13,16-docosapentaénoate

all-cis7,10,13,16,19-docosapentaénoate

beta oxydation oxidation acide gras fatty acid biochimej
22 6 (animaux) C22:6 Δ4,7,10,13,16,19 (acide gras ω-3) cervonate all-cis4,7,10,13,16,19-docosahexaenoate - 44°C
24 6 C24:6 Δ6,9,12,15,18,21 (acide gras ω-3) nisinate all-cis6,9,12,15,18,21-tétracosahexaénoate ------

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Le glycérol est métabolisé dans le foie : il y est essentiellement utilisé pour former du glucose via la néoglucogénèse.

Les acides gras sont transportés via la circulation sanguine par un sytème complexe avec l'albumine. Ils sont alors distribués dans le coeur, le muscle squelettique et le foie, où ils sont oxydés.

La β-oxydation des acides gras a lieu dans la matrice de la mitochondrie où les enzymes de la β-oxydation sont à proximité des complexes de la chaîne respiratoire.

La β-oxydation a lieu sur le carbone en position β et correspond à l'hydrolyse successive des 2 carbones (expérience de Knoop) en position C-terminale de l'acide gras : acide gras à n carbones => acide gras à n-2 carbones => acide gras à n-4 carbones ...

beta oxydation oxidation acide gras fatty acid acyl COA biochimej

Il existe une α-oxydation (acides gras à chaîne branchée comme l'acide phytanique) et une ω-oxydation (exemples : acide ω-phenylvalérique et acide ω-phenylbutyrique).

Les peroxysomes sont capables d'oxyder de nombreux substrats y compris les esters d'énoyl-CoA poly-insaturés. La β-oxydation dans les peroxysomes (mais aussi dans les mitochondries) implique le métabolisme de doubles liaisons carbone-carbone pré-existantes.

En plus des enzymes de l'hélice de Lynen, ce métabolisme nécessite la participation d'enzymes auxiliaires : la Δ32-énoyl-CoA isomérase, la Δ2,4-diénoyl-CoA réductase, la Δ2-énoyl-CoA hydratase ou la 3-hydroxyacyl-CoA épimérase et la Δ3,52,4-diénoyl-CoA isomérase.

Bon nombre de ces enzymes sont présentes sous forme d'isoformes situées dans plusieurs compartiments sub-cellulaires, tandis que d'autres font partie d'enzymes multi-fonctionnelles du système de la β-oxydation.

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2. Activation des acides gras

La première partie de la β-oxydation est l'activation des acides gras dans le cytoplasme par formation d'une liaison thioester entre le groupement carboxyle de l'acide gras et le groupe thiol du coenzyme A. Les acides gras deviennent des acyl-CoA.

L'activation nécessite l'hydrolyse de l'ATP.

Cette réaction est catalysée par l'acyl-CoA synthétase ou acyl-thiokinase. Il existe différentes acyl-CoA synthétases pour des acides gras de longueurs différentes.

beta oxydation oxidation acide gras fatty acid acyl COA biochimej

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Le coenzyme A ou CoA ou CoA-SH

Il permet les réactions de transfert des groupes acyles (R-C=O).

Ces groupes sont liés au coenzyme A par des liaisons thioester, liaisons à haut potentiel énergétique (ΔG°' = - 9 kcal/mol).

beta oxydation oxidation acide gras fatty acid Lynen helice helix coenzyme A biochimej

Le coenzyme A est un dérivé de l'acide pantoténique, vitamine de la famille des vitamines B.

Remarque : l'adénosine 3', 5' -diphosphate n'est pas à confondre avec l'ADP = adénosine 5' -diphosphate.

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3. Entrée dans la mitochondrie : rôle de la carnitine

Les membranes mitochondriales sont imperméables aux acyl-CoA à longues chaînes.

Ils la franchissent en étant convertis en acyl-carnitine à partir de la carnitine (synthétisée dans le foie à partir de la lysine).

L'entrée dans la matrice s'effectue via :

  • Un système de navettes : les carnitine acyltransférases I et II, sur la membrane externe et la sur la membrane interne de la mitochondrie.
  • et un système de transport : la carnitine-acylcarnitine translocase, sur la membrane interne de la mitochondrie (non représentée sur la figure ci-dessous).

carnitine acylcarnitine transferase translocase beta oxydation oxidation acide gras fatty acid coenzyme A CoA biochimej

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Les carnitine acyltransférases

Elles catalysent la réaction : acyl-CoA + L-carnitine <=> CoA-SH + L-acylcarnitine

La famille des carnitine acyltransférases inclue :

  • Les carnitine acétyltransférases (CRAT) ou carnitine acyltransférases I (CAT I) : acides gras à courtes chaînes.
  • Les carnitine octanoyltransférases (COT) : acides gras à chaînes moyennes.
  • Les carnitine O-palmitoyltransférases I (CPT1 - E.C. 2.3.1.21) : acides gras à chaînes longues. Il existe 3 isoformes : CPT-Ia ou L-CPTI dans le foie - CPT-Ib ou M-CPTI dans le coeur et le muscle squlettique - CPT-Ic dans le cerveau. Ce sont des homo-trimères ou -hexamères inhibés de manière allostérique par le malonyl-CoA.

Elle sont situées sur le feuillet côté cytosol de la membrane externe de la mitochondrie.

  • La carnitine O-palmitoyltransférase II (CPT1 - E.C. 2.3.1.21) : Elle est localisée sur le feuillet côté matrice de la membrane interne de la mitochondrie. Elle re-convertit l'acyl-carnitine en acyl-CoA qui rejoint alors la β-oxydation dans la matrice mitochondriale.

Figure ci-dessous : mécanisme catalytique des carnitine acyltransférases.

carnitine acyl acyltransferase beta oxydation oxidation acide gras fatty acid coenzyme A CoA biochimej

Le résidu catalytique His 343 peut arracher un proton (mécanisme de catalyse base générale) à la carnitine ou au CoA-SH.

La forme oxyanion de l'intermédiaire tétraédrique est stabilisée par des interactions avec la carnitine et le groupement hydroxyle de la chaîne latérale de Ser 554.

Visualisation de la carnitine acétyltransférase de Mus Musculus à une résolution de 1,9 Å.

Code PDB : 1NDI

Remarque : seule la chaîne A est représentée.

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La carnitine-acylcarnitine translocase ("Mitochondrial carnitine/acylcarnitine carrier protein" - CAT) transporte les acyl-carnitines de différentes longueurs du cytosol vers la matrice mitochondriale à travers la membrane mitochondriale interne.

Il s'agit d'un antiport : les acyl-carnitines sont échangés contre la carnitine libre.

carnitine acylcarnitine transferase translocase beta oxydation oxidation acide gras fatty acid coenzyme A CoA biochimej

La structure des CAT est typique de la famille des transporteurs mitochondriaux avec 3 segments répètés d'une centaine d'acides aminés, chacun contenant le motif signature PX[DE]XX[RK].

Autres protéines

D'autres protéines interviennent dans le transport et le catabolisme des acides gras, parmis lesquelles :

  • "Long-chain acyl-CoA synthetases"
  • Les protéines de transport des acides gras ("Fatty Acid Transport Protein" - FATP) sont des protéines transmembranaires : elles constituent une famille de 6 protéines fortement homologues (FATP1 et FATP4 : muscle squelettique - FATP1 et FATP6 : coeur - FATP5 : foie). Elles ont une activité acyl-CoA synthétase.
  • "Plasma membrane fatty acid-binding protein" identique à l'aspartate aminotransférase mitochondriale
  • "Cytoplasmic fatty acid-binding proteins" pour le maintien d'une vitesse élevée de la β-oxydation
  • "Peroxisome proliferator-activated receptor alpha" : un facteur de transcription qui fixe les acides gras et module leur oxydation par les cellules hépatiques

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4. La β-oxydation

a. Les réactions d'un tour d'hélice des acides gras saturés

4 étapes sont nécessaires pour transformer l'acyl-CoA d'acide gras mitochondrial en acétyl-CoA.

1ère étape : L'acyl-CoA déshydrogénase (E.C. 1.3.8.9) forme un acyl-CoA (α-β) insaturé, par oxydation avec transfert d'électrons à l'ubiquinone (Q) via des transporteurs intermédiaires :

  • Les électrons passent de l'acyl-CoA d'acide gras au groupe prosthétique FAD de l'acyl-CoA déshydrogénase
  • les électrons passent à un autre groupe prosthétique FAD lié à une flavoprotéine de transfert d'électrons (ETF), hétérodimère (αβ avec un FAD par dimère). ETF interagit avec de nombreuses protéines membranaires qui ne sont pas toutes impliquées dans la β-oxydation : c'est un élément mobile d'équivalents de réduction comme Q
  • les électrons sont alors cédés à une flavoprotéine fer-soufre membranaire, l'ETF:ubiquinone oxydoréductase qui réduit l'ubiquinone.

Chez les Mammifères, il existe 3 groupes d'acyl-CoA déshydrogénases : acides gras à chaînes courtes (4 - 6 C), moyennes (6 - 10 C) et longues (12 - 18 C).

L'acyl-CoA déshydrogénase des acides gras à longues chaînes est attachée à la membrane interne de la mitochondrie. Les autres sont solubles dans la matrice.

Un résidu glutamate du site actif et la position du FAD à l'opposé de ce glutamate jouent un rôle capital dans la stéréospécificité de la réaction : l'isomère trans est formé.

Figure ci-dessous : les 4 réaction de la β-oxydation.

beta oxydation oxidation acide gras fatty acid Lynen helice helix acyl CoA coenzyme A acetyl biochimej

  • En orange, la suite de la β-oxydation ou hélice de Lynen. Feodor Lynen a obtenu le Prix Nobel en 1964.
  • Les travaux de Franz Knoop (1904) avec des chiens sont à la base de l'élucidation de la voie de la β-oxydation.

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2ème étape : La réaction d'hydratation catalysée par l'enoyl-CoA hydratase (E.C. 4.2.1.17) est stéréospécifique : l'énoyl-CoA est hydraté pour former l'isomère L du 3-hydroxyacyl-CoA.

La plupart des doubles liaisons des acides gras d'origine naturelle sont en configuration cis. Comme 2 atomes de carbone sont retirés à chaque tour d'hélice, une double liaison peut aboutir à une mauvaise configuration pour servir de substrat à l'énoyl-CoA hydratase.

3éme étape : L'oxydation qui suit par le NAD+ est catalysée par la L-β-hydroxyacyl-CoA déshydrogénase (E.C. 1.1.1.35). Le groupement hydroxyle est transformé en fonction cétone : formation du 3-cétoacyl-CoA.

4éme étape : La dernière réaction d'un tour de la de la β-oxydation est une thiolyse catalysée par la β-cétoacyl-CoA thiolase (E.C. 2.3.1.16) - appelée aussi acétyl-CoA acyltransférase :

  • le groupe sulfhydryle nucléophile d'une molécule de CoA-SH attaque le carbone carbonyle du 3-cétoacyl-CoA
  • une molécule d'acétyl-CoA est libérée formant ainsi un acyl-CoA à (n-2) carbones

Tours suivants de l'hélice : Cet acyl-CoA à (n-2) carbones devient le nouveau substrat de cette série de 4 réactions jusqu'à ce que la molécule d'acide gras initial soit convertie en acétyl-CoA. Au fur et à mesure que la chaîne raccourcit, les différentes isoenzymes d'acyl-CoA déshydrogénases interviennent.

Il est à noter qu'il existe une forte ressemblance chimique de certaines étapes de la β-oxydation et du cycle de Krebs.

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b. Bilan de la β-oxydation des acides gras saturés

acyl-CoA à n carbones + FAD (coenzyme Q) + NAD+ + CoA-SH + H2O => acyl-CoA à (n-2) carbones + FADH2 (coenzyme QH2) + NADH + H+ + acétyl-CoA

Pour un acide gras à n carbones, il y a :

  • [(n/2) - 1] tours d'hélice de Lynen
  • [(n/2) - 1] NADH
  • [(n/2) - 1] FADH2
  • (n/2) acétyl CoA

Exemple : palmityl-CoA + 7 FAD (coenzyme Q) + 7 NAD+ + 7 CoA-SH + 7 H2O => 1 acétyl-CoA + 7 FADH2 (coenzyme QH2) + 7 NADH + 7 H+ + 7 acétyl-CoA

Si l'acide gras contient un nombre pair de carbones, le butyryl-CoA final est converti en 2 acétyl-CoA.

L'équivalence en ATP est la suivante : 8 acétyl-CoA produisent 96 ATP, 7 FADH2 produisent 14 ATP et 7 NADH produisent 21 ATP, soit un total de 131 ATP. L'activation de l'acide palmitique en palmityl-CoA nécessitant 2 ATP, le rendement net est 129 ATP par molécule de palmitate oxydé.

A nombre de carbones équivalents, un acide gras génère plus de molécules d'ATP qu'un ose : par exemple, le glucose ne fournit que 38 ATP (le bilan étant à rapporter au nombre de carbones : 16 pour le palmitate et 6 pour le glucose). Les oses sont déjà des molécules en partie oxydées.

L'acétyl-CoA n'est pas converti intégralement en glucose, sauf chez les organismes qui possèdent le cycle du glyoxylate. Comme l'acétyl-CoA est le principal composé formé par la β-oxydation des acides gras, ceux-ci ne se transforment généralement pas en glucides chez les animaux.

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c. La β-oxydation des acides gras à nombre impair de carbones

La plupart des acides gras naturels contiennent un nombre pair d'atomes de carbone. Il existe cependant des acides gras à nombre impair de carbone synthétisés, par exemple, par les bactéries des estomacs des ruminants.

Leur oxydation passe par les mêmes étapes que celles des acides gras à nombre pair d'atomes de carbone.

Il existe cependant des enzymes supplémentaires : en effet, le dernier tour d'hélice de la β-oxydation d'un acide gras à nombre impair de carbone débouche sur l'acétyl-CoA et le propionyl-CoA (à 3 atomes de carbone). Le propionyl-CoA est converti en succinyl-CoA, un intermédiaire du cycle de Krebs.

beta oxydation oxidation acide gras fatty acid Lynen helice helix acyl CoA coenzyme A acetyl biochimej

a. La propionyl-CoA carboxylase - enzyme à biotine - qui catalyse l'incorporation de bicarbonate au propionyl-CoA pour former du D-méthylmalonyl-CoA.

b. La méthylmalonyl-CoA racémase (ou épimérase R/S) : conversion du D(R)-méthylmalonyl-CoA en L(S)-méthylmalonyl-CoA.

c. La méthylmalonyl-CoA mutase qui forme le succinyl-CoA. Cette enzyme nécessite le cofacteur adénosylcobalamine, dérivée de la vitamine B12.

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d. La β-oxydation des acides gras insaturés

Les acides gras insaturés sont bien représentés dans la nature.

Les acides gras poly-insaturés contiennent à la fois des liaisons doubles à numéro pair et des liaisons doubles à numéro impair, car les liaisons doubles sont en général séparées par un groupe méthylène.

Par exemple, le linoléate (C18,cis,cis9,12-octadécadiénoate) possède une double liaison de chaque type.

Comme dans le cas des autres acides gras insaturés, le linoléyl-CoA est un substrat de la β-oxydation jusqu'à ce que la double liaison d'une chaîne raccourcie interfère avec le processus catalytique.

Àprès 3 tours d'hélice, le linoléyl-CoA est transformé en C12,cis,cis3,6-diénoyl-CoA.

Cette molécule possède une liaison double (cis-β,γ) au lieu d'une liaison double (trans-β,γ) : elle ne peut pas être un substrat de l'énoyl-CoA hydratase. La réaction catalysée par l'énoyl-CoA isomérase réarrange la liaison Δ3 en Δ2 pour former le C12,trans,cis2,6-diénoyl-CoA.

Celui-ci rejoint la β-oxydation où il y subit 1 tour complet pour former le C10,cis4-énoyl-CoA.

Celui-ci est transformé en C10,trans,cis2,4-diénoyl-CoA par l'acyl-CoA déshydrogénase (l'enzyme qui catalyse la 1ère étape de la β-oxydation).

beta oxydation oxidation acide gras fatty acid Lynen helice helix acyl CoA coenzyme A insature biochimej

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Le C10,trans,cis2,4-diénoyl-CoA est stabilisé par résonance : sa liaison double ne subit pas l'hydratation.

L'addition d'un hydrure au cation et d'un proton à l'anion de l'une des formes résonantes expliquent la position de la liaison double dans le produit formé : C10,trans3-énoyl-CoA.

Celui-ci (comme l'isomère cis au préalable) est un substrat de l'énoyl-CoA isomérase : le produit formé, C10,trans2-énoyl-CoA, rejoint la β-oxydation.

beta oxydation oxidation acide gras fatty acid Lynen helice helix acyl CoA coenzyme A insature biochimej

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5. La cétogénèse

La β-oxydation génère l'acétyl CoA qui entre dans le cycle de Krebs.

S'il y a trop d'acétyl CoA formé, ou durant le jeûne (pendant lequel l'oxaloacétate est épuisé dans le foie car il est utilisé pour la néoglucogénèse), l'acétyl-CoA en excès est converti dans les mitochondries du foie en corps cétoniques : acétoacétate, β-hydroxybutyrate et acétone.

Les acides aminés dits cétogènes qui alimentent le cycle de Krebs (par exemple la leucine), forment de l'acétoacétate et de l'acétyl-CoA et, par voie de conséquence, sont susceptibles de contribuer à la formation de corps cétoniques.

Chez les Mammifères, la cétogénèse a lieu dans la matrice des mitochondries de cellules du foie.

beta oxydation oxidation acide gras fatty acid Lynen helice helix biochimej

Quatre enzymes sont impliquées dans la synthèse des corps cétoniques :

β-cétothiolase (Acétyl-CoA acétyltransférase - E.C. 2.3.1.9) : la dernière étape de la voie de la β-oxydation a lieu en sens réverse, 2 acétyl-CoA se condensent pour former l'acétoacétyl-CoA, avec libération de d'un CoA-SH. Elle est aussi impliquée dans la voie du mévalonate.

HMG-CoA synthase (E.C. 2.3.3.10) : elle catalyse la condensation d'une troisième portion d'acétate (de l'acétyl-CoA) avec l'acétoacétyl-CoA pour former le β-hydroxy-β-méthylglutaryl-CoA (HMG-CoA). Elle est aussi impliquée dans la voie du mévalonate.

HMG-CoA lyase (E.C. 4.1.3.4) : elle clive le HMG-CoA pour former l'acétoacétate et l'acétyl-CoA.

Il y a ensuite une décarboxylation non enzymatique de l'acétoacétate et formation d'acétone.

β-hydroxybutyrate déshydrogénase (E.C. 1.1.1.30) : elle catalyse l'interconversion de l'acétoacétate et du β-hydroxybutyrate. Elle a besoin de la phosphatidylcholine comme activateur allostérique.

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L'acétoacétate et le β-hydroxybutyrate traversent la membrane mitochondriale puis la membrane plasmique et rejoignent la circulation sanguine. Une petite proportion de l'acétoacétate se décarboxyle en acétone dans le sang.

Les corps cétoniques sont transportés par le sang dans les cellules d'autres organes. Une fois dans ces cellules, l'acétoacétate et le β-hydroxybutyrate rejoignent les mitochondries :

beta oxydation oxidation acide gras fatty acid Lynen helice helix biochimej

Le β-hydroxybutyrate est transformé en acétoacétate par une β-hydroxybutyrate déshydrogénase, isoenzyme distincte de l'enzyme du foie.

L'acétoacétate réagit avec le succinyl-CoA pour former l'acétoacétyl-CoA, réaction catalysée par la succinyl-CoA transférase.

Cette réaction détourne du cycle de Krebs une certaine quantité de succinyl-CoA : l'énergie qui aurait servi à former du GTP par phosphorylation au niveau du substrat par la succinyl-CoA synthétase est détournée pour activer l'acétoacétate en acétoacétyl-CoA .

L'acétoacétyl-CoA est ensuite converti en 2 molécules d'acétyl-CoA par la thiolase. L'acétyl-CoA entre dans le cycle de Krebs afin de générer de l'ATP.

Les corps cétoniques servent donc de combustible. Bien qu'ils contiennent une énergie métabolique potentielle moindre que les acides gras dont ils dérivent, ils servent de "lipides hydrosolubles" plus aptes que les acides gras à une oxydation rapide dans le coeur et le rein.

Pendant le jeûne, les corps cétoniques sont produits en grande quantité et leur concentration sanguine augmente au point qu'ils se substituent au glucose en tant que principal combustible du cerveau.

Alors que les corps cétoniques fonctionnent comme "fuel" cellulaire alternatif, les acides aminés doivent être dégradés pour approvisionner l'entrée dans la néoglucogénèse en cas d'hypoglycémie, car l'acétate ne peut pas être converti en glucose.

 

6. Liens Internet et références bibliographiques

"Lipid Catabolism: Fatty Acids & Triacylglycerols"

"Fatty Acid Oxidation"

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Knoop F. (1904) "Der Abbau aromatischer Fettsäuren im Tierkörper" Beitr. Chem. Physiol. Pathol. 6, 150 - 162

Fritz & McEwen (1959) "Effects of carnitine on fatty-acid oxidation by muscle" Science 129, 334–335

Houten & Wanders (2010) "A general introduction to the biochemistry of mitochondrial fatty acid β-oxidation" J. Inherit. Metab. Dis. 33, 469 - 477

 

Article

Article

Jogl & Tong (2003) "Crystal Structure of Carnitine Acetyltransferase and Implications for the Catalytic Mechanism and Fatty Acid Transport" Cell 112, 113 - 122 Article

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